最近,很多同学向小尚反映细胞复苏经常遇到困难。细胞复苏是细胞培养中的一项常规操作,但其中的许多细节常常被忽视。复苏的成败与冻存及复苏操作密切相关,一不小心就可能酿成大错。本文将从冻存的角度进行分析,下周将更新复苏操作的原因排查,欢迎各位同学收藏关注!
首先,让我们回顾一下冻存步骤:
- 提前准备好冻存液。
- 离心获得细胞沉淀后,加入冻存液轻轻重悬细胞。
- 将细胞悬液转移至冻存管中。
- 如果使用程序冻存液,将冻存管放入程序冻存盒中,置于-80℃冰箱过夜后存入液氮。如果使用非程序冻存液,则无需冻存盒。
常见冻存错误操作
1. **未使用适当的冻存盒**:当使用常规含血清的冻存液(培养基+血清+DMSO)时,如果没有使用程序降温冻存盒或泡沫盒等保温措施,降温过快可能导致细胞因冰晶的形成而破裂死亡。建议使用商用程序冻存盒,确保温度以1℃/min的速度缓慢下降。没有冻存盒的同学可以将冻存管放在泡沫盒中在4℃静置5-10分钟,再转入-20℃静置2小时后,最后移入-80℃冰箱过夜,第二天再转入液氮保存。如果没有冻存盒和泡沫盒,建议使用无血清的非程序冻存液,因其含有更多保护剂,可以直接重悬细胞后置于-80℃冰箱过夜,再转入液氮。
2. **冻存前细胞状态不佳或冻存密度过低**:良好的细胞状态是复苏成功的前提。冻存时应选择对数生长期且汇合度达到80%以上的细胞。若冻存前细胞培养上清呈橘黄色,建议更换培养基后静置培养4小时再进行冻存。冻存密度应保持在200-300万/mL/管,若不方便计数,可以按一个T25培养瓶冻存1-2管,一个10cm培养皿冻存2-3管(确保细胞汇合度在80%以上)。
3. **直接将DMSO加入细胞悬液**:DMSO在稀释时会放热,可能对较脆弱的细胞造成损伤。因此,建议提前配制冻存液后再处理细胞,以确保细胞的存活率。
4. **未经过适当降温直接放入液氮**:冻存液重悬细胞后要经过-80℃冰箱降温,直接放入液氮中会导致细胞死亡。绝对不要将细胞放在液氮罐口降温。
5. **冻存液配方不合适**:研究表明,5%-10%的DMSO适合大多数细胞冻存,具体比例应根据细胞种类进行调整。对于对DMSO敏感的细胞,需要降低其比例。根据小尚的经验,8%的DMSO适用于大部分细胞系。同时,还需根据细胞培养难度调整血清比例,难养的细胞需要添加更多血清。对于过于脆弱的细胞,推荐使用血清+DMSO进行冻存,而不添加培养基。在冻存前,建议进行一次冻检,以确认细胞状态良好后再进行大规模冻存。确保在冻检成功前至少保留一瓶细胞培养,以免因复苏失败导致细胞绝种。
6. **冻存条件不当或冻存时间过长**:液氮储存的稳定性优于-80℃冰箱,后者因频繁开关导致温度不够稳定,细胞活率下降较快,因此建议尽量将细胞存放于液氮中。如果没有液氮罐,同学们可以将冻存管放在-80℃冰箱的内部位置,并定期进行复苏检测活性。
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